Мазок на менингококк из носоглотки


Мазок из носоглотки на менингококк.

Цель: собрать материал для бактериологического

исследования.

Оснащение:

Обязательное условие: забор материала из носоглотки проводить натощак, до орошения или полоскания

горла.

этапы

обоснование

Подготовка к процедуре

— Объяснить ребенку/маме цель и ход процедуры, установить доброжелательные

отношения.

-Получить согласие.

— Обеспечение права на информацию;

— Психологическая подготовка, осознанное

участие в исследовании

— Подготовить необходимое оснащение.

— Выписать направление в лабораторию.

— Обеспечение четкости проведения

процедуры

— Вымыть и осушить руки, надеть маску,

перчатки.

— Обеспечение инфекционной безопасности

— Поставить на инструментальный столик необходимое оснащение (расположив по

правую руку).

— Создание удобства при проведении

процедуры.

— Усадить ребенка лицом к источнику света, при необходимости зафиксировать

его с помощью помощника:

ноги ребенка помощник обхватывает своими

ногами;

руки и туловище фиксирует одной рукой;

голову держит, положив ладонь другой руки на

лоб ребенка.

— Для удобства проведения процедуры

Выполнение процедуры

— Попросить ребенка широко открыть рот

и шпателем нажать на корень языка.

Примечание: ребенку младшего возраста открыть рот с помощью шпателя, взяв его как писчее перо левой рукой, ввести в ротовую полость до зубов, повернуть ребром и провести по боковой поверхности десен до места окончания зубов, после чего перевернуть его плашмя, поместить

на корень языка и резко нажать на него.

— Обеспечение доступа к зеву.

— Извлечь ватный тампон из пробирки, взяв его правой рукой за пробку, в

которую он вмонтирован.

— Осторожно, не касаясь языка, зубов, слизистой оболочки полости рта, ввести тампон изогнутым концом вверх, за

язычок в носоглотку.

— Место максимальной локализации

менингококка – носоглотка.

— Двумя-тремя легкими движениями собрать

слизь с задней стенки глотки.

— Извлечь тампон из ротовой полости и поместить в пробирку, не касаясь ее

краев.

— Обеспечение достоверности результата

исследования.

Завершение процедуры

— Вымыть и обработать антисептическим

материалом руки в перчатках.

— Снять маску, перчатки.

— Вымыть и осушить руки.

— Обеспечение инфекционной безопасности

— Немедленно отправить материал в бактериологическую лабораторию в сопровождении направления при

температуре 37-380

С.

— Обеспечение правильной оценки

результатов исследования.

— Менингококк неустойчив во внешней

среде.

mngb.ru

Основные практические навыки инфекциониста забор материала для бактериологического исследования

ОСНОВНЫЕ ПРАКТИЧЕСКИЕ НАВЫКИ ИНФЕКЦИОНИСТА

ЗАБОР МАТЕРИАЛА ДЛЯ БАКТЕРИОЛОГИЧЕСКОГО ИССЛЕДОВАНИЯ

Бактериологические методы основаны на выделении микробов-возбудителей в чистой культуре путем посевов материала, взятого от больного, на искусственные питательные среды. Кроме того, имея микроб-возбудитель в чистой культуре, можно определять его чувствительность к антибиотикам и химиопрепаратам. Забор материала для бактериологических исследований должен осуществляться до начала лечения этиотропными средствами, посев необходимо производить немедленно после забора материала непосредственно у постели больного. Если собранный материал нельзя направить в лабораторию, в него добавляют консервирующую смесь. При отсутствии последней материал нужно хранить в холодильнике при температуре +4°С или на льду.

Посев крови лучше всего делать в начальном периоде болезни или в разгаре, сразу после озноба (наиболее выраженная бактериемия). Посев крови производится на жидкие питательные среды  сахарный, сывороточный, желчный бульон и др. Состав среды выбирается в зависимости от биологических особенностей возбудителя предполагаемой у больного инфекции. Чтобы избежать влияния бактерицидных свойств крови, ее необходимо разводить большим количеством среды, примерно в отношении 1:10. Обычно берут 10  20 мл крови и засевают в колбу, содержащую 90  180 мл среды. Переливать кровь из шприца в колбу надо над пламенем спиртовки, предварительно сняв иглу. Колбу с посевом направляют в лабораторию, а вечером и ночью помещают в термостат. При отсутствии питательной среды кровь собирают в стерильную пробирку с соблюдением таких же правил.

Посевы испражнений производятся при кишечных инфекциях (брюшной тиф, паратифы А и В, дизентерия, сальмонеллезы, эшерихиозы и др.), а также когда возникает подозрение на кишечные инфекции или имеются признаки поражения желудочно-кишечного тракта.

Забор испражнений (2  3 г) производится стерильным деревянным шпателем или стеклянной палочкой из судна, горшка, специального лотка, а также непосредственно из прямой кишки с помощью ватных тампонов, металлических петель или через трубку ректоскопа. В судне или горшке не должно оставаться следов дезинфицирующего средства, для чего их необходимо тщательно промыть горячей водой. Нужно стремиться взять слизь, гной, фибринные пленки, избегая примеси крови в связи с ее бактерицидным действием. Забор материала из прямой кишки не зависит от числа дефекаций и может быть сделан в любой момент. Для забора материала петлей (тампоном) больного просят лечь на бок с приведенными к животу бедрами и ладонями развести ягодицы. Петля осторожным движением вводится в задний проход на глубину 5  6 см и также осторожно вынимается. Затем петля помещается в стерильную пробирку и направляется в лабораторию. Лучше всего сразу же сделать посев материала на питательную среду.

Мочу (20  30 мл) собирают в стерильную, плотно закрывающуюся посуду при помощи стерильного катетера после предварительного обмывания половых оргнов с мылом и ополаскивания их стерильным физиологическим раствором. У мужчин допустим сбор мочи при естественном мочеиспускании после туалета наружных половых органов (для посева используется , вторая порция мочи).

Желчь (10  20 мл) забирается во время дуоденального зондирования. В отдельные стерильные пробирки собирают все три порции желчи (А, В и С). Конец зонда предварительно обрабатывают спиртом, затем после выделения 1  2 мл желчи (не используется для исследования) наполняют пробирки непосредственно через зонд или с помощью стерильного шприца. При наличии кислой реакции (примеси желудочного сока), хлопьев, белесоватого оттенка жидкости материал считается непригодным.

Промывные воды желудка (20  50 мл) собираются в стерильные банки после промывания желудка кипяченой водой без добавления натрия гидрокарбоната, калия перманганата и др.

^

Посевы слизи из зева производятся при дифтерии, менингококковой инфекции, ангине, острых респираторных вирусных заболеваниях, коклюше и других инфекциях. Тампон, с помощью которого забирается материал, должен быть заранее простерилизован в лаборатории. Обычно ватный или марлевый тампон навертывается на деревянную палочку или проволоку из нержавеющего материала и опускается в пробирку.

Мазок из зева берут натощак или не ранее 2 ч после полоскания, питья либо еды под визуальным контролем с использованием шпателя, как при осмотре зева, не касаясь тампоном слизистых оболочек рта, языка,зубов. Корень языка придавливают книзу и кпереди шпателем, держа его левой рукой, а правой рукой осторожно вводят в ротовую полость тампон и снимают налет. Лучше всего снять налет или слизь на границе пораженного участка, где возбудителей больше, чем в других местах.

Перед взятием слизи из носа необходимо предварительно очистить нос (предложить больному высморкаться) сухим ватным фитилем и удалить корки. Тампон вводят в каждую ноздрю, плотно прикасаясь всеми сторонами его к стенкам и перегородке носа. Полученный материал с тампона немедленно высевается на соответствующие плотные питательные среды, а также наносится на предметное стекло, обводится стеклографом, подсушивается и направляется в лабораторию для микроскопического исследования.

Забор материала для риноцитологического исследования производится следующим способом. Небольшой ватный тампон на деревянной палочке, увлажненный физиологическим раствором, вводят в носовой ход на глубину 2  3 см, слегка прижимая всеми сторонами к слизистой оболочке нижней носовой раковины. Затем с тампона делаются отпечатки на чистом, обезжиренном эфиром предметном стекле. Границы отпечатков обводятся стеклографом. Отпечатки подсушиваются и направляются в лабораторию, где после специальной окраски при микроскопии в них определяются клеточный состав и характер внутриклеточных включений.

Мазки-отпечатки слизистой носа можно приготовить также на специальных пластинках из стекла или плексигласа. Пластинки должны иметь длину 70  80 мм, ширину 5  6 мм, толщину 2  2,5 мм, закругленные и хорошо отшлифованные края. После обработки пластинки эфиром ее вводят в носовой ход на глубину 2  3 см, слегка прижимая к носовой перегородке. Выводят пластинку наружу также по носовой перегородке, стараясь не смазать отпечаток. Границы отпечатка отмечают стеклографом, подсушивают и направляют в лабораторию для дальнейшего исследования.

Для иммунофлюоресцентной диагностики (метод ускоренной диагностики гриппа и других ОРВИ в первые дни болезни) исследуемый материал обрабатывают сыворотками, содержащими специфические антитела, меченные флюорохромами. Соединение меченых антител с гомологичными антигенами сопровождается характерным свечением комплексов, выявляемых в люминесцентном микроскопе.

Смывы из носоглотки используются главным образом для выделения вирусов при гриппе, кори, краснухе, ветряной оспе и других вирусных инфекциях. Они производятся в первые дни болезни, когда возбудитель интенсивно размножается в эпителиальных клетках дыхательных путей. Больному предлагают прополоскать горло стерильным физиологическим раствором. Процедуру повторяют трижды, используя при этом каждый раз по 10  15 мл жидкости. Смывы собирают в широкогорлую стерильную банку. Кусочками стерильной ваты, захваченной пинцетом, протирают заднюю стенку глотки и носовые ходы. Ватные тампоны опускают в банку со смывом. Материал направляют в лабораторию для последующего изучения (вирусологический, иммунофлюоресцентный и другие методы исследования).

Микроскопия мазка на дифтерию. Одним из методов ускоренной диагностики дифтерии является предварительная бактериоскопия патологического материала (слизь из зева или носа и пленки). Такое исследование выполняют только по требованию лечащего врача. В этих случаях материал берут двумя тампонами, один из которых используют для выделения культуры возбудителя, а другим делают несколько мазков для бактериологического исследования. Мазки окрашивают щелочным раствором метиленового синего по Леффлеру или другими способами.

При положительных результатах под микроскопом среди банальной (преимущественно кокковой) микрофлоры зева и носа видны дифтерийные палочки, расположенные под углом друг к другу. Дифтерийные палочки полиморфны, часто утолщены на концах, неравномерно окрашены. На концах палочек имеются зерна волютина (тельца Бабеша  Эрнста), окрашивающиеся темнее, чем остальное тело палочки, что особенно хорошо выявляется при окраске по Нейссеру (тело палочки светло-коричневое, а зерна волютина темно-синие). При микроскопии мазка дифтерийную палочку следует дифференцировать от ложнодифтерийной (палочка Гофмана), которая характеризуется отсутствием полиморфизма, равномерным окрашиванием (отсутствие зерен волютина), параллельным расположением палочек. Бактериоскопическое исследование должны проводить опытные специалисты (в предварительном мазке типичные дифтерийные палочки редко встречаются в достаточном количестве). Примерно у 50% больных дифтерией можно обнаружить возбудителя, таким образом, однако это не позволяет установить вид коринебактерий, их тип и токсигенность. Вместе с тем надо помнить, что положительный результат предварительного исследования очень ценен для лечащего врача. Кроме того, при бактериоскопическом исследовании можно выявить возбудителя ангины Симановского- Плаута-Венсана (спирохеты и веретенообразные палочки) и микотической ангины, а тем самым провести дифференциальную диагностику этих двух заболеваний и дифтерии. После бактериоскопии мазка обязательно проводится бактериологическое исследование материала. Цель его  выделить культуру возбудителя, изучить ее свойства с обязательным определением токсигенности.

^

МЕНИНГОКОККОВОЙ ИНФЕКЦИИ

Бактериологическое исследование слизи проводится при любой форме менингококковой инфекции, но наибольшее значение оно имеет при ме-нингококковом назофарингите и для выявления носительства менингококка. Слизь из носоглотки берется натощак или через 34 ч после еды. Стерильный тампон, укрепленный на изогнутой проволоке, направляется концом вверх и подводится под мягкое небо в носоглотку. Обязательно следует надавливать шпателем на корень языка. При извлечении тампона он не должен касаться зубов, а также слизистой щек и языка. Транспортировка незасеянных тампонов в лабораторию не допускается. Посев взятой слизи в чашки с плотной питательной средой производится на месте. Помимо сывороточного агара, который не является элективной средой, одновременно рекомендуется делать посев на среду, где подавляется рост грамположительных кокков, обильно вегетирующих на слизистой носоглотки. Для этой цели используется среда с ристомицином, ингибирующим рост грамположительных кокков, Нейссерии малочувствительны к этому антибиотику, и при его концентрациях в среде порядка 100  150 ед/мл их рост почти не подавляется. Окончательный результат выдается на 4-й день исследования.

Положительный результат бактериологического исследования носоглоточной слизи играет решающую роль в постановке диагноза локализованной формы менингококковой инфекции (назофарингит, менинго-кокконосительство). Большое значение придается выделению менингококка из носоглотки и при генерализованных формах болезни. Вместе с тем не надо забывать, что и при менингитах другой этиологии в носоглоточной слизи больного может быть обнаружен менингококк. Отрицательные результаты бактериологического и бактериоскопического исследований не исключают менингококковую этиологию заболевания.

^

Приготовление мазка и толстой капли крови при малярии. Основной метод лабораторной диагностики малярии  обнаружение эритроцитарных паразитов в толстой капле или мазке крови. В практической работе исследуют преимущественно толстые капли, так как за один и тот же промежуток времени в толстой капле можно просмотреть в 30  50 раз больший объем крови, чем в мазке, следовательно, и количество плазмодиев в ней больше. К мазку обращаются лишь в тех случаях, когда видовую принадлежность найденных паразитов по толстой капле установить не удается. Для выявления возбудителей малярии кровь берут при первом же подозрении на эту инфекцию независимо от температуры тела, поскольку паразиты циркулируют в крови и в интервале между приступами.

Предметные стекла, на которых готовят препараты, должны быть хорошо вымыты и обезжирены. Кровь берется с соблюдением правил асептики. Кожу пальца протирают спиртом и прокалывают простерилизованной иглой-копьем или толстой инъекционной иглой. Если кровь из мякоти пальца вытекает плохо, то больного просят сделать несколько энергичных движений рукой, кистью и слегка массируют палец. Первую выступившую каплю крови вытирают сухой ватой, затем палец поворачивают проколом вниз и ко второй капле прикасаются предметным стеклом. Тонкие мазки крови приготавливают по методике, общепринятой для гематологических исследований. Мазок не должен доходить ни до конца, ни до краев предметного стекла. Поэтому капля крови должна быть диаметром не более 2  3 мм. Предметное шлифованное стекло, которым делается мазок, должно быть уже стекла, на которое наносят мазок. Для этого углы шлифованного стекла обламывают пинцетом. В целях приготовления мазка шлифованное стекло ставят перед каплей крови под углом 45° и продвигают вперед до соприкосновения с ней. Когда кровь равномерно распределится между обоими стеклами, быстрым движением делают мазок.

Для приготовления толстой капли крови на предметное стекло наносят каплю крови диаметром около 5 мм. Эту каплю размазывают иглой или углом предметного стекла в диск диаметром 10  15 мм. Толщина капли должна быть такой, чтобы сквозь нее можно было читать газетный шрифт Мазки не должны быть толстыми, поскольку после высыхания они растрескиваются и отстают от стекла. Обычно на стекло наносят 2  3 капли на некотором расстоянии одна от другой. Взятые капли должны быть отмечены. На обратной стороне стекла восковым карандашом указывается фамилия больного или соответствующий регистрационный номер.

Очень удобно наносить толстую каплю на влажный толстый мазок крови. В этом случае капля самостоятельно растекается в правильный диск. Простым карандашом на мазке делается маркировка препарата Такой препарат удобен еще и тем, что в мазке довольно хорошо сохраняется часть пораженных эритроцитов, а это важно для уточнения вида паразита. Преимущество данного метода в том, что капля, нанесенная на мазок, удерживается более прочно, чем нанесенная непосредственно на стекло. Приготовленные толстые капли высушивают при комнатной температуре не менее 2  3 ч без какого-либо дополнительного подогревания во избежание фиксации крови. После высыхания капли на нее наливают краску Романовского  Гимзы, разведенную как обычно (2 капли краски на 1 мл дистиллированной воды). Продолжительность окраски в среднем составляет 30  45 мин. Окрашенную каплю осторожно ополаскивают водопроводной водой (сильная струя может смыть каплю) и просушивают в вертикальном положении. Фильтровальной бумагой ее высушивать нельзя. При окраске капли в водных растворах красок происходит выщелачивание гемоглобина из эритроцитов, вследствие чего в окрашенной капле эритроциты уже не видны. Из форменных элементов сохраняются лейкоциты и тромбоциты. Мазки фиксируют, помещая их на 3 мин в метиловый или на 10 мин в 96% этиловый спирт. Зафиксированные препараты высушивают на воздухе, защищая от пыли и мух. Потом препараты помещают в специальный контейнер и окрашивают азур-эозиновым красителем по Романовскому  Гимзе на протяжении 20  30 мин. По истечении этого срока контейнер подставляют под слабую струю воды и промывают. После того как из контейнера польется неокрашенная вода, остатки ее сливают и промывают еще раз. Не рекомендуется сначала сливать краску, а затем промывать мазок водой, поскольку пленка, образовавшаяся на поверхности красителя, может попасть на препараты и оказаться причиной диагностической ошибки. Капля на мазке окрашивается так же, как толстая капля. Промытые препараты высушивают и исследуют под микроскопом. В зараженных эритроцитах видны плазмодии малярии с голубой цитоплазмой и ярко-красным ядром. Нахождение плазмодиев малярии в крови больного является неоспоримым доказательством болезни.

medznate.ru

ВЗЯТИЕ МАЗКА ИЗ НОСОГЛОТКИ НА МЕНИНГОКОКК

Приготовить:

— стерильные пробирки с сухим ватным изогну­тым тампоном;

— штатив для пробирок;

— стерильный шпатель в лотке;

— бланк - направление в лабораторию;

— чашку Петри с питательной средой;

— бикс для транспортировки пробирок;

— стеклограф.

1. Вымыть и осушить руки.

2. Надеть перчатки, маску.

3. Поставить на пробирке (чашке Петри) стекло­графом номер, соответствующий номеру в направ­лении.

4. Установить пробирку в штатив.

5. Усадить ребенка лицом к источнику света (при необходимости зафиксировать его с помощью по­мощника).

6. Попросить ребенка открыть рот.

7. Нажать шпателем на корень языка левой рукой.

8. Ввести тампон изогнутым концом вверх под мягкое небо в носоглотку (не касаясь зубов, язы­ка), по шпателю.

9. Собрать слизь из носоглотки легким движени­ем, проведя 2-3 раза.

10. Извлечь тампон из ротовой полости и помес­тить в пробирку, не касаясь ее краев, предваритель­но произведя посев на чашку Петри с питательной средой (не нарушая целости поверхности).

11. Вымыть и обработать руки антисептическим раствором.

12. Выписать направление по образцу.

13. Отправить материал в лабораторию (при t + 37°; + 38°С),

Примечание: Забор материала производить на­тощак, до приема лекарства, до орошения полости рта дезрастворами, до чистки зубов, до назначения антибиотиков.

Образец направления Направление В бактериологическую лабораторию направляется мазок из носоглотки на менингококковую инфекцию
Ф.И.О. ребенка Петрова Сергея Ивановича
Возраст 5 лет
Диагноз обследование
Домашний адрес, детская поликлиника ул. Кузнечная, №-120, кв. 15 Д/с, группа №5, участок 3
Место нахождения Детское инфекционное отделение, палата №6
Дата и время забора 1 сентября 2002Т., 8 ш
Ф.И.О. врача Крошкина Л.С.
Подпись м/с  


pdnr.ru

Забор слизи из носоглотки

Цель: диагностическая.

Показания: подозрение на менингококковую инфекцию (менингококковый назофарингит), контакт с больным менингококковой инфекцией.

Противопоказания: бессознательное состояние пациента

Подготовить:

1.Стерильную пробирку со стерильным ватным тампоном на металлическом стержне, согнутым под углом 135°.

2. Шпатель

3. Штатив

4. Стерильные перчатки.

5.Направление.

6 Маску.

7.Лоток для использованного материала

Подготовка пациента:

1.Установить доверительные отношения с пациентом, объяснить цель и ход исследования, получить согласие на проведение манипуляции.

2.Усадить пациента лицом к источнику света.

3. Попросить пациента сдвинуть обе ноги в сторону, запрокинуть голову и широко открыть рот.

Техника выполнения:

1.Провести гигиеническую обработку рук. Надеть маску и стерильные перчатки.

3.Сесть напротив пациента, достаточно близко, ноги сдвинуть в другую сторону.

4. Взять из пробирки металлический стержень с тампоном.

6. Взять в левую руку шпатель и пробирку, надавить шпателем на язык, не касаясь корня, правой рукой ввести в глотку стерильный тампон, таким образом, чтобы он был введён под язычок.

7. Осторожно провести тампоном по задней стенке глотки штриховыми движениями.

8. Извлечь тампон из полости рта, не касаясь слизистой оболочки рта и языка, опустить

его в стерильную пробирку, не касаясь стенок.

  1. 9. Поставить пробирку с тампоном в штатив.

Последующий уход:

1. Отпустить пациента, обработать рабочее место дезинфицирующим раствором.

2. Провести дезинфекцию шпателя.

3. Снять перчатки и замочить в дезинфицирующем растворе.

4. Провести гигиеническую обработку рук.

5. Оформить направление в бактериологическую лабораторию.

6. Прикрепить к наружным стенкам маркированных пробирок соответствующие направления.

7. Штатив с пробирками поместить в герметичную ёмкость, отправить в бактериологическую лабораторию.

Возможные осложнения: травма слизистой оболочки.

Примечания:

1. Мазок из носоглотки производится натощак.

2. Материал отправляется в лабораторию немедленно при t-37°.

3. В инфекционных отделениях, можно выполнить посев сразу на питательную среду (кровяной агар) на чашку Петри, сразу отправив посев в термостат.

- объяснить пациенту необходимость исследования.

- спросить пациента о его самочувствии.

- успокоить пациента, если он испытывает страх перед манипуляцией.

-пояснить, что так лучше видно зев пациента и возможные патологические изменения в зеве.

-пояснить, что данное положение будет способствовать правильному взятию мазка.

-пояснить, что прикосновение к корню языка может вызывать рвотную реакцию у пациента.

-попросить пациента сообщить медсестре о неприятных ощущениях (позыв к рвоте, чувство царапания).

studfiles.net


Смотрите также